Globalization and International Affairs Program - A maior ameaça à segurança da água potável é a contaminação microbiana da matéria fecal. Fontes de água mal construídas ou protegidas podem ficar contaminadas, ou saneamento e higiene inadequados podem introduzir contaminação após a recolha de água. E porque os patogenos são tão pequenos, a água contaminada pode cheirar, saborear e parecer perfeitamente limpa. Então, a única maneira de realmente confirmar se a água está contaminada é fazer um teste, e tradicionalmente isto envolve o uso de laboratórios com equipamento especializado e pessoal treinado. Agora, o teste de laboratório é ótimo mas apresenta algumas desvantagens. Em primeiro lugar, a distância. Os laboratórios podem não estar localizados perto do local onde os testes estão a ser efetuados. E como as amostras microbianas devem ser testadas nas primeiras 6 horas, ou no máximo 24 horas após a recolha, isto representa um verdadeiro desafio. Os testes de laboratório também podem ser caros, e pode ser difícil obter os resultados do laboratório de volta para as autoridades locais. No entanto, avanços técnicos, tornaram os testes em campo mais práticos, fáceis e baratos. Então, algumas destas novas opções incluem o método do Número Mais Provável, onde vários pequenos compartimentos são testados, e um teste estatístico informa o número mais provável de contaminantes de bactérias. Também a filtração por membrana é cada vez mais realizada no campo. Além disso, os novos meios de crescimento enzimático reagem especificamente com certas bactérias, como E. coli, o indicador preferido para contaminação fecal, o que torna os resultados mais robustos. E, finalmente, há uma nova geração de incubadoras de baixo custo, que pode ser feito sem eletricidade, ou pelo menos longe de um laboratório bem equipado. Então, aproveitando todos estes avanços, a OMS e UNICEF desenvolveram um módulo de teste de qualidade da água que pode ser aplicado em pesquisas nacionais, e isto foi feito e pilotado, em várias pesquisas de agrupamento de indicadores múltiplos ou pesquisas MICS. O pacote consiste em três elementos. Primeiro, um sistema de filtração por membrana realizada por Millipore, o sistema Microfill. Segundo, suportes de crescimento, as placas Nissui Compact Dry EC. E terceiro, incubação portátil, e esta é a incubação Body-belt. Estes materiais são usados pelas equipas de campo MICS depois de passar por uma formação básica. Durante a pesquisa, as equipas pedem aos entrevistados um copo de água que dariam a uma criança para beber, e testam essa água. Em alguns casos, eles também visitam a fonte onde a água foi recolhida, e testam a água diretamente da fonte. E para fazer o teste, usam um sistema de filtração por membrana para passar a água através de um pedaço especial de papel que tem pequenos buracos, e os buracos são grandes o suficiente para deixar a água passar, mas pequenos o suficiente para prender todas as bactérias na superfície do papel. Este filtro de papel é então colocado em algum meio de crescimento com toda a comida e água que as bactérias precisam para crescer, e deixado por 24 horas, para que as bactérias possam crescer e formem colónias de bilhões de células, que se tornam visíveis a olho nu. Assim que as colónias crescem, podem ser contadas e os resultados podem ser registados e partilhados com as comunidades. Nestes testes de campo, as equipas MICS na verdade testam duas amostras: um teste de 100 mL para baixa contaminação, e um teste de 1 mL para alta contaminação, e isto é porque se há um grande número de bactérias na água podem formar tantas colónias que é difícil de ler. Portanto, para amostras altamente contaminadas, uma amostra de 1 mL é a melhor opção. Agora vamos ver como é o equipamento de teste. A primeira parte do kit é um instrumento de filtro, ou Manifold, e este é produzido por Millipore, como parte da sua linha de produtos Microfill. O instrumento de filtro é usado com um filtro de papel, e um funil de plástico, também feito por Millipore. Estes são estéreis e descartáveis; é precisar usar um por amostra testada. Nós também usamos uma seringa de plástico simples, para criar um vácuo e filtrar a amostra. O teste requer vários acessórios pequenos: pinças para manusear o filtro de papel, um algodão embebido em álcool para esterilizar o instrumento e a pinça, uma pequena seringa de plástico para re-hidratar as placas de crescimento, e uma caneta permanente para marcar as placas de crescimento. Finalmente, temos o meio de crescimento. Há muitas opções disponíveis, mas usamos um meio de crescimento enzimático produzido pela Nissui, chamado Compact Dry EC Plates. Estes vêm pré-embalados e embrulhados em folhas, em conjuntos de quatro, e o melhor desta embalagem é que as placas podem ser armazenadas à temperatura ambiente por 18 meses. Então, vamos ver como este teste funciona. O primeiro passo é reunir todos os nossos materiais e rotular as duas placas Compact Dry com esta caneta. Esta é uma amostra de "água de lago". Ok. Tenho um copo de água do Lago de Genebra que colhi previamente. Vamos ver o que há nesta água. Em seguida, temos que nos certificar de que as nossas mãos e os nossos equipamentos estão limpos, e para isso vamos usar um simples pano com álcool, para esterilizar a pinça e o colector, e algum desinfetante de álcool para as mãos. Também pode usar sabão e água, se for mais conveniente. Com o pano com álcool, primeiro esterilizamos a pinça, e depois a parte do coletor que estará em contacto com o filtro de papel. Aqui é bom usar a pinça para estabilizar o coletor. Ok, depois vamos colocar a pinça numa superfície limpa para a manter estéril, e o próximo passo que vamos fazer é pegar no filtro de papel estéril. Agora, o filtro de papel Millipore vem com uma folha azul protetora, que não é o filtro de papel e não quer usar isso. Então, o que eu gosto de fazer é primeiro tirar e remover o papel azul, e, em seguida, pegar no papel branco, com o lado quadriculado para cima, e colocá-lo no coletor. Ainda precisa manter a pinça limpa, mas agora estamos prontos para colocar o funil de plástico. E os funis de plástico também são estéreis. Eles são guardados nestas bolsas de plástico. Abre a bolsa e tira um, e coloque-o diretamente em cima do filtro de papel. Aqui vamos nós. Agora despejamos a água no funil de plástico até a linha no funil que está marcado em 100 mL. Um pouco mais ou menos de água não importa. Nós só queremos saber o nível geral de contaminação. Agora precisamos re-hidratar estas placas Compact Dry. Vamos tirar a tampa deles, dos dois deles, e abrir esta seringa estéril de 1 mL. Retire 1 mL de água do funil e coloque-o em cada uma das placas Compact Dry. Agora as placas contêm nutrientes para as bactérias, mas as bactérias não podem aceder a estes nutrientes a menos que sejam re-hidratadas, por isso é importante adicionar um pouco de água. Está feito. Agora, para um destes, o teste de 1 mL está completo, e podemos colocar a tampa nele. Para o outro, vamos filtrar a água através do papel e vamos colocar o filtro de papel dentro da placa. Para isso, usaremos esta seringa de 100 mL. Vamos apenas ligar a seringa a um dos lados do instrumento e puxar suavemente para sugar a água através da membrana. Recorde que os buracos na membrana são pequenos o suficiente para prender todas as bactérias no papel. E, por isso, quaisquer bactérias presentes nesta amostra de água do lago vão estar neste filtro de papel quando terminarmos de filtrar a água. Demora apenas alguns minutos. Ok. Às vezes precisa de remover a seringa e fazer dois lotes, como acabámos de fazer aqui. Ok, lá vamos nós. Tirámos a água toda. De seguida, removemos o funil de plástico, não precisamos mais disto. Use a pinça para remover este papel e coloque-o diretamente no meio de crescimento. Agora colocamos a tampa na placa e está pronto. Agora apenas temos que limpar, certifique-se que leva todos os materiais residuais, e deite-os fora. Na verdade, é uma boa ideia ter um balde do lixo quando faz o teste no campo, porque nem sempre há um lugar bom e seguro para descartar os resíduos. Agora temos bactérias nas placas, com nutrientes e água. Tudo o que precisam para crescer é um pouco de calor e de tempo. Agora, E. coli estará mais feliz quando a temperatura estiver em torno de 35-37 graus, embora cresça em temperaturas até 20 graus, mas demora um pouco mais. Se a temperatura ficar acima de 40 graus, não crescem bem nesse meio em particular. Em laboratório, temos incubadoras elétricas que pode regular muito bem a temperatura para obter a temperatura desejada, mas para este teste de campo, não as temos, mas existem algumas alternativas recentemente desenvolvidas que podemos usar. A primeira é usar uma incubadora elétrica, mas pequeno e portátil como este, que pode funcionar com eletricidade, se tiver, mas também pode funcionar com baterias ou através da conexão a um adaptador de cigarro de um automóvel. Portanto, existem versões diferentes. É uma boa opção. Uma segunda opção que está em desenvolvimento, na fase de pesquisa, é chamado de Incubadora Mudança de Fase, e este é um exemplo que foi desenvolvido na Universidade de Bristol. Funciona como um termo, enche este termo com água a ferver e deixa a água repousar cerca de meia hora, de seguida deita fora a água, e o termo irá reter o calor da água a ferver, e se colocar as placas lá dentro e fechar, a incubadora vai manter a temperatura a cerca de 35 graus por mais de 24 horas. E por isso é uma técnica muito boa e não requer eletricidade. Mas há outra fonte de calor disponível nestas pesquisas, que usamos nos pilotos MICS, que é o calor do corpo da equipa de pesquisa. Os corpos humanos estão a cerca de 37 graus, que é uma temperatura perfeita para incubar. Então, a ONG chamada ENPHO, no Nepal, desenvolveu uma incubadora Body-Belt para aproveitar o calor do corpo. Este é apenas um cinto de tecido, com alguns bolsos costurados. Pode inserir as placas nos bolsos, e depois colocar o cinto à volta da cintura, e é isto! Você torna-se numa incubadora humana. E, até agora, tem-se mostrado ser muito bem sucedido em testes de campo. Existe uma quarta opção disponível, dependendo do clima, que é apenas para incubar as placas à temperatura ambiente, temperatura ambiente normal. E se você estiver num país onde a temperatura está acima de, digamos, 20, 25 graus, idealmente 30 graus, isso também pode ser uma boa opção. Uma vez as amostras incubadas por 24-48 horas, podemos contar as colónias. Agora as bactérias E. coli formarão colónias azuis nas placas Compact Dry, e outros coliformes, como coliformes totais ou coliformes termotolerantes irá produzir colónias vermelhas ou violetas. Aqui estão alguns exemplos. Agora, outras bactérias também podem crescer nas placas, mas formarão colónias brancas ou amarelo pálido ou outra cor, mas não são coliformes ou E. coli, e por isso não nos preocupamos. Assim que as colónias se formarem, podemos simplesmente contar o número de colónias azuis e de colónias vermelhas ou violetas e registar os resultados. Se as placas tiverem níveis muito altos de bactérias, é difícil ver colónias individuais, e pode ter placas que estão sobrecarregadas, que parecem completamente rosa ou completamente azuis. Quando os resultados estiverem registados, devem ser partilhados com as autoridades locais ou comunidades e, de seguida, as placas devem ser descartadas com segurança, o que significa que devem ser desinfetados usando cloro ou calor e, em seguida, descartados. Vamos ver alguns desses resultados. A primeira amostra que mostrei foi a água do Lago de Genebra. Como pode ver, essa água tem muitas bactérias, muitas dessas colónias vermelhas e violetas, mais de 100, e quando está acima de 100, nem nos incomodamos mais em contar. Mas só tem uma das colónias azuis, o que significa E. coli. Agora, uma segunda amostra que testei foi tirada de uma casa de banho, e nesta água, vemos que há muitas e muitas destas colónias azuis, E. coli, mais de 100 numa amostra de 100 mL, mas nenhum dos outros coliformes e isso faz sentido, porque a água da casa de banho está cheia de bactérias fecais. Uma vez que os dados são registados, podem ser analisados e apresentados mas é importante saber que os dados são de boa qualidade, e por isso temos algumas verificações de consistência e controlo de qualidade que devem ser aplicados. Uma verificação de consistência compara os resultados do teste de 100 mL contra o teste de 1 mL. Agora, claro que o teste de 100 mL deve ter cerca de 100 vezes mais bactérias do que o teste de 1 ml. Portanto, se esta proporção for muito diferente, pode haver um problema. Também é uma boa prática ter algumas amostras vazias, para garantir que as pessoas obtêm contagens de zero quando a água é conhecida por estar livre de contaminação, e é muito valioso ter equipas de especialistas a visitar as equipas de campo, enquanto fazem o trabalho de campo, para se certificar de que estão a fazer o teste corretamente. Uma vez assegurada a qualidade dos dados, podemos classificar os resultados em classes de risco, e normalmente observamos menos de 1 E. coli, que corresponde às diretrizes reguladoras, e 1 a 10, 11 a 100 e 100 ou mais colónias que representam amostras cada vez mais perigosas ou de alto risco. A equipa MICS desenvolveu tabelas padrão e textos para o software estatístico que analisa os dados, para tornar mais fácil para os países padronizarem a sua análise, e, em seguida, os resultados podem ser apresentados num relatório de resumo padrão com a restante das informações recolhidas na pesquisa MICS, ou num relatório focalizado num tema especial, que pode entrar em mais detalhes sobre os resultados dos testes de qualidade da água. Vimos uma demonstração de um conjunto de testes para E. coli fáceis de implementar no campo sem necessidade de eletricidade, instalações laboratoriais, ou técnicos altamente treinados. Ao usar material pré-embalado, o sistema reduz as oportunidades de algum tipo de contaminação poder ser introduzida, embora ainda seja importante incluir o controlo de qualidade e medidas de garantia, como testar as placas vazias regularmente. O sistema não é muito caro e especialmente quando pode ser vinculado a um programa em curso e já financiado, a recolha de dados pode ser muito económica. Este sistema foi aplicado em MICS e outras pesquisas ao domicílio a nível nacional, mas também pode ser útil para uso programático geral. Como exemplo, no Bangladesh, depois deste sistema ter sido utilizado numa pesquisa MICS, o escritório da UNICEF usou os materiais para fazer testes de qualidade da água do fornecimento de água que havia sido instalado nas áreas do seus programas. Claro que precisamos lembrar que uma única medida de E. coli não é uma medida robusta de segurança da água. Para isso, irá querer planos de segurança de água, ou pelo menos inspeções sanitárias. Mas para obter uma avaliação rápida da qualidade da água ou para monitorizar uma intervenção, como uma intervenção de tratamento doméstico de água, até mesmo uma quantidade limitada de testes microbianos pode ser muito útil e pode ajudar a identificar problemas e direcionar recursos para alcançar melhorias..
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Franca:
Andrew Ingram, Queens: Plaza College. Joinville: Sarah Lawrence College, Yonkers; 2018.
Holly Salinas, Chemung County. Maringá: Phillips Beth Israel School of Nursing; 2007.
Marilyn Lozano, Desbrosses Street zip 10013. Araguaína: Gerstner Sloan Kettering Graduate School of Biomedical Science; 2005.